本法应用直接法或间接法的原理和步骤，可对活细胞在试管内进行染色，常用于T和B细胞、细胞培养物、瘤细胞抗原和受体等的检查和研究，阳性荧光主要在细胞膜上。FACS即采用此法原理。
应用于电镜水平的免疫法，可分为包埋前染色和包埋后染色，由于包埋前染色对细胞膜的穿透性差，一般只用于细胞表面的抗原标记，如需穿透细胞膜，则需辅以冻融法或加入Triton X—100、皂素等活性剂，后者会加重细胞超威结构的破坏，因此，现较普遍采用包埋后染色，现分别介绍如下：
...亲合力要高出100万倍，能够彼此牢固结合而不影响彼此的生物学活性。同时，生物素与卵白素都具有与其它示踪物质如荧光素、铁蛋白和过氧化酶等相结合的能力。免疫细胞化学工作者利用上述特性，建立了卵白素—生物素免疫染色系统。由于维生素H习惯上称为生物素，为便于理解，现在译名上统称卵白素为抗生物素或亲合素。所以卵白素—生物素免疫染色系统又称为抗生物素—生物素免疫染色法。
...：100）室温30min。 （5）DAB·4HCl/H 2 O 2 (0.05%/0.01%)，室温1.5min。上述每一步骤后应用PBS洗涤（5min×3次）。 （6）在解剖显微镜下检出免疫反应阳性部位，修整组织，用0.1mol/L磷酸缓冲液稀释的1%锇酸（pH7.4）后固定30min～1h。 （7）按常规电镜样品制备， 脱水 、包埋、超薄切片、染色观察。
（1）将载有切片的镍网（或金网）在5%的H 2 O 2 液中蚀刻（etch）2～3min。生理盐水冲洗，滤纸吸干。 （2）正常 羊血 清用0.05mol/L Tris盐液（TBS）稀释成1：30，pH7.0，室温5min 。 （3）兔抗血清（第一抗体），内含1%正常 羊血 清，用0.05%mol/l Tris缓冲液稀释，pH7.6,4℃，48h后以Tris缓
（1）1mm厚组织块，在4 ℃ 下用固定液固定后，置于含4.5%的蔗糖PBS（0.05mol/l pH7.2），4 ℃ 中漂洗，换数次固定液，过夜。 （2）随后，作10～40μm的冰冻切片，放入第一抗体血清作用12～18h，4℃，用含蔗糖的PBS洗数次。 （3）置于HRP标记抗体液（第二抗体）4 ℃ 过夜。然后用4℃含蔗糖PBS反复冲洗数次。4 ℃ 浸漂过夜
一、基本原理
（1）用4%多聚甲醛（在0.05mol/l 磷酸缓冲液中，pH7.2）在原位固定（4 ℃ ）1h。 （2）用0.05mol/l PBS充分洗涤后，用HRP标记的抗体血清作用18h，再用PBS充分洗涤。 （3）2%戊二醛固定1h，再水洗。 （4）呈色反应，用DAB—H 2 O 2 呈色反应，水洗。 （5）1%锇酸后固定30min～1h，原位用环氧树脂包埋，光镜
生殖细胞中的 染色体异常 ，会引发新生婴儿的许多疾病，包括 不孕症 (infertility)、(miscarriage)、染色体数目不规则(非整倍体；aneuploidy)，等等。一项来自卡罗林斯卡研究所(karolinskainstitute)的新的研究报告向我们展示了，生殖细胞形成的时候，染色体紊乱的发生机制。 生殖细胞中通常有一套“控制站”(cont...
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